CENTRO DE  BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS,No199.

MIXQUIAHUALA,HGO.

Punción capilar

BIOMETRIA HEMATICA.

Dr.vicente Martínez fragoso

Dulce Sharon Garnica Lugo.

       Semestre 4DM                                         Laboratorista clínico.     

Periodo Febrero-Julio

PUNCION CAPILAR

Objetico.

REALIZAR CORRECTAMENTE EL PROCEDIMIENTO DE LA PUNCION CAPILAR.

Fundamento

Los vasos sanguíneos (arterias, capilares y venas) son conductos musculares elásticos que distribuyen y recogen la sangre de todos los rincones del cuerpo. Se denominan arterias a aquellos vasos sanguíneos que llevan la sangre, ya sea rica o pobre en oxígeno, desde el corazón hasta los órganos corporales. Las grandes arterias que salen desde los ventrículos del corazón van ramificándose y haciéndose más finas hasta que por fin se convierten en capilares, vasos tan finos que a través de ellos se realiza el intercambio gaseoso y de sustancias entre la sangre y los tejidos. Una vez que este intercambio sangre-tejidos a través de la red capilar, los capilares van reuniéndose en vénulas y venas por donde la sangre regresa a las aurículas del corazón.

MATERIAL:

·        Algodón.

·        Lancetas desechables y estériles

·        Tubos capilares

·        Portaobjetos

·        Pipetas Pasteur

·        Cuba de tinción

·        Pizeta

SUSTANCIAS:

·        Colorante de Wright

·        Buffer de fosfato

·        Alcohol al 70%

·        Agua

PROCEDIMIENTO

1.Una vez seleccionada la zona, se desinfecta la zona con alcohol al 70%, secar con algodón estéril.

2. Punzar la piel con una lanceta estéril desechable (2 mm de profundidad).

3. La primera gota de sangre se deja perder, limpiándola con la gasa sin tocar la zona pinchada

4. Se espera a que caigan más gotas, sin exprimir el área pinchada porque eso diluiría la sangre con líquido extracelular. *Sobre un portaobjetos, si es necesario estudiar una extensión de sangre. En este caso, se recogió en un portaobjetos.

5.- Tinción de Wright.

6. Observar al microscopio para diferenciar células sanguíneas.

OBSERVACIONES

Frotis sanguíneo 10x

Frotis sanguíneo 40x

Se distinguen la estructura de los eritrocitos, y el núcleo del leucocito al centro, el cual está teñido de color purpura.

Frotis 100x

Se distingue a las dos un codocito o célula en forma de blanco. A su lado izquierdo un linfocito, con su característico núcleo enorme un neutrófilo.

RESULTADOS

Como puede verse, es posible distinguir algunas de las células o elementos formes de la sangre, abundando en gran cantidad los eritrocitos, de los cuales la mayoría presentaba forma redonda con centro pálido, debido a su biconcavidad y otros más eran eliptocitos y solo fue encontrado un codocito como la forma más rara.

CONCLUSIÓN

Se recurre a la punción capilar cuando la cantidad de sangre que se precisa es muy pequeña o cuando por diferentes motivos no pueda practicarse una punción venosa, por ejemplo en los recién nacidos, lactantes, niños donde no se observan adecuadamente las venas, en personas con quemaduras extensas o bien en pacientes que han recibido quimioterapia por cáncer y tienen sus venas fibrosas (duras).

BIBLIOGRAFIA

vasosanguineozulaymadrid.blogspot.es/En caché - Similares

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MIXQUIAHUALA, HGO.

Practica: No.8

TAMIZADO

Dr. Vicente Martínez Fragoso

Laboratorista clínico

DULCE SHARON GARNICA LUGO

Semestre: Tercero                          Grupo: DM

Periodo: Agosto-Diciembre

TAMIZADO

OBJETIVO

Es una nueva práctica desarrollada relacionada con el aprendizaje de las tenias, es de gran importancia que sepamos elaborarla de igual manera que las ya realizadas, esta nos dará una apertura total para un diagnostico correcto sobre esta parasitosis.

FUNDAMENTO

La técnica de tamizado Permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados. tal es el caso de los helmintos:Taenia solium y T. saginata.

Es un parásito importante del hombre en aquellos lugares donde el consumo frecuente de la carne de cerdo y de res cruda o insuficientemente cocida, ya que la carne de estos animales puede contener las fases larvarias delas tenias mencionadas, las cuales se denominan céstodos o cisticercos. Después de la expulsión espontánea de proglótidos, estos se pueden recuperar por medio de la técnica de TAMIZADO en heces expulsadas En caso de obtenerse proglótidos, deben comprimirse entre el portaobjetos y observarlos a contra luz o en un microscópico

MATERIAL

*1 coladera de tamiz fino

*1 abatelenguas

*1 caja petri

* 1 pinzas

*1 porta objetos

*1 cubre objetos

*Microscopio

PROCEDIMIENTO

1.-Coloca pequeñas porciones de materia fecal en la coladera con el abatelenuas.

2.-Dispersar la muestra con el abatelenua y agregarle agua asta lograr un tamizado lomas limpio posible.

3.-Revisar cuidadosamente las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.

4.-Los parásitos encontramos colocados en una caja petri con solución salina.

5.-Se identifica la parte del parasito o el completo.

6.-Se reportara el genero y la especie del parasito o parte del parasito.

Conclusión: Esta práctica nos fue muy útil para aprender a identificar macroscópicamente los distintos tipos de parásitos para posteriormente observarlos microscópicamente.

PAGINAS CONSULTADAS

 

http://www.scribd.com/doc/2362916/MANUAL-PARASITOLOGIA-LABORATORIO-PARTE-II

www.ops.org.ar/publicaciones/.../libroETAs/.../modulo3j.html

www.monografias.com › Salud › Enfermedades

PRACTICA "TECNICA DE STOLL"

S.E.P                            D.G.T.I                                   S-E.M.S

Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicios No.199

MIXQUIAGUALA, HGO.

Practica: No.7

TECNICAS DE CUENTA DE HUEVOS EN HECES LA TECNICA DE STOLL

Dr. Vicente Martínez Fragoso

DULCE SHARON GARNICA LUGO.

Laboratorista clínico

Semestre: Tercero                          Grupo: DM

Periodo: Agosto-Diciembre

TECNICA DE CUENTA DE HUEVOS EN HECES LA TECNICA DE STOLL.

OBJETIVO

En esta práctica aprenderemos a realizar un método cuantitativo sobre la presencia de huevecillos.

FUNDAMENTO

Esta técnica fue ideada y desarrollada por Stoll en 1923, debido a sus características de accesibilidad en costo y material a utilizar es uno de los más empleados de manera exitosa en encuestas epidemiológicas.

Este método forma parte de los exámenes considerados cuantitativos, por lo que es necesario tener el antecedente de que la muestra se encuentra positiva, para su posterior cuantificación

Los métodos coproparasitoscopicos se dividen en:

- Cualitativos: Son aquellos que solo nos informan si hay o no formas
parasitarias en el producto estudiado.

- Cuantitativos: Nos dan a conocer numéricamente cuantas formas
parasitarias están presentes, las cuales se reportan
por gramo o mililitro de heces, según la técnica
que se utilice.

Después de identificar un parasito, puede ser necesario determinar la intensidad de la infestación. Por lo general, la sintomatología de las enfermedades parasitarias se correlacionan con el numero de parásitos presentes, se conoce la eliminación diaria de huevecillos de varias especies de helmintos. Por lo tanto, se hace una estimación del número. Sobre los resultados tienen influencia muchas variables, como dieta, mala ingestión, los ciclos de producción de huevos y la  consistencia de las heces. Pero las cuentas que se realizan antes y  durante el tratamiento, permite guiarlo y las realizadas después se servirán como referencia para el éxito mismo.los mejores resultados s logran cuando las cuentas se realizan en muestra sucesivas obtenidas en un periodo de varios días, de manera que se pueda determinar el promedio diario de liberación de huevos.

MATERIAL

·         Tubo cónico

·         Aplicador

·         Cuentas de vidrio

·         Portaobjetos

·         Cubreobjetos

·         Microscopio

REACTIVOS

·         Hidróxido de sodio

MUESTRA BIOLOGICA

·         Heces

PROCEDIMIENTO

1.- Llenar el tubo cónico con hidróxido de sodio 0.1N hasta la marca 5.6 ml.

2.-Con un aplicador agregar heces hasta llegar a la marca 6ml del tubo cónico.

3.-Se añaden 5 cuentas de vidrio se tapa y se agita hasta que las heces se desmoronen por completo. Sesten

4-Cuando las heces estén disueltas por completo se agita el tubo un minuto y de inmediato se toman 0.075ml de la suspensión y se colocan en un portaobjetos.

5.- Se coloca el cubre objetos.

6.- Se observa en el microscopio.

 OBSERVACIONES

 En la primera muestra se observa restos de alimentos y fibras.

COMENTARIOS

Es una practica muy fácil y rápida de realizar, ya que en las practicas anteriores solo se puede saber si hay presencia de huevecillos, sin en cambio esta es una técnica cuantitativa que te permite ver la presencia de  estos y en que intensidad se presentan. En esta ocasión no encontramos el objetivo pero si ejecutamos correctamente nuestro procedimiento.

PAGINAS CONSULTADAS

www.scribd.com/doc/51575922/1/METODO-DE-STOLL

www.buenastareas.com › Ciencia

Calculo:

1.-La disolución fecal original es el de 1 en 15(4ml/60m,). Como se contaron los huevos en un volumen total de 0.15ml, el numero total de estos en 1mlde heces se encuentran al multiplicar la cuenta total por 100(1/5 X 0.15 x 100=1).

2.-Suponiendo que el promedio de una persona rebasa los 100g de heces por día, es posible calcular el número de huevos por día multiplicando el resultado por 100(o la cuenta de la suspensión original por 10000).

3.-Para determinar el número de parásitos hembras presentes, se divide el número diario de huevecillos que hay en las heces entre el número promedio de:

Hembra de la especie necator: 7000huevos/día.

Hembra de la especie Ascaris: 200000 huevos/ día.

Hembra de la especie Thichuris: 7500 huevos/ día.

4.-Se encuentra la cantidad total de parásitos al multiplicar por dos resultados encontrados en el paso tres, ya que se supone que en cualquier infestación hay un parasito macho por cada parasito hembra.

5.-Algunos técnicos creen que deben utilizar los factores de correlación de la consistencia de las heces para obtener resultados más exactos. Para esto, se debe multiplicar el numero que se obtiene en el paso uno para el factor apropiado. Heces formadas=1, blandas formadas=1.5, blandas diarreicas=3, fluidas diarreicas=4, muy liquidas=5.

METODO DE CONCENTRACION FLOTACION DE FAUST

OBJETIVO

Buscar en las muestras biológicas la presencia de los distintos parásitos para tener un conocimiento más amplio sobre ellos.

FUNDAMENTO

Las parasitosis intestinales son un conjunto de padecimientos causados principalmente por protozoarios y helmintos y considerados un problema de salud pública.

El examen coproparasitoscopico (CPS) es un conjunto de técnicas diagnósticas que constituyen la indicación para la identificación de la mayoría de las enteroparasitosis causadas por protozoarios o helmintos. Su eficacia y sensibilidad para establecer un diagnóstico correcto dependen de la adecuada indicación y preparación de la muestra, los datos clínicos y antecedentes de interés que sean aportados al laboratorio y de su correcta y completa ejecución con examen directo microscópico.

Faust es el método mas usado y efectivo, en este se precipitan los parásitos por centrifugación después de haber filtrado la muestra.

·         Es un examen coproparasitoscopico cualitativo de concentración por  centrifugación y flotación.

·         Hace una buena concentración de quistes huevos y larvas.

La técnica de Faust, hace una buena concentración de quistes, huevos y larvas; es la técnica preferida por la generalidad de los laboratorios. Las formas parasitarias son encontradas con facilidad pues las preparaciones quedan con pocos artefactos. Los elementos parasitarios son recuperados de la capa superficial y los residuos se mantienen en el fondo del tubo. Con estas técnicas los preparados son más limpios que los obtenidos por sedimentación.

La frecuencia de las distintas parasitosis es alta, sobre todo en países en vías de desarrollo; es importante por ello que los laboratorios clínicos manejen de forma rutinaria varios métodos coproparasitoscópicos alternativos que apoyen el diagnóstico parasitológico.

 

MUESTRA            Examen microscópico                   Método de concentración

   Heces

                                                                                                         Flotación

                                                                                                           FAUST

MATERIAL

·         Porta objetos.

·         Cubreobjetos.

·         Gasas.

·         Tubos de ensayo.

·         Solución acuosa de sulfato de Zn.

Muestras biológicas

·         Heces

TECNICA

1) Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 partes de agua destilada.

2) Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en cuatro, sobre un tubo de centrifuga, ayudándose con un embudo pequeño.

3) Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 1min.

4) Decantar el liquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Re suspender el sedimento.

5) Repetir el procedimiento hasta 2 veces hasta que el liquido sobrenadante este listo.

6) Decantar nuevamente el líquido sobrenadante remplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 33%. Mezclar bien la solución bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante 1 minutos por 1500 rpm.

7) Tomar de 3-4 gotas de las partículas que flotan en la superficie del liquido. Colocarlos en un porta-objeto y mezclar con 1-2 gotas de lugol, colocar cubre-objeto

8) Examinar al microscopio y reporte sus resultados.

Método indicado para el diagnostico de huevos livianos de helmintos (Necator, Tricocefalos, Áscaris, H.nana).

Observaciones

                   

En la primera muestra trabajada solo encontramos grasa.               

En la segunda muestra trabajada se observaron jabones, residuos vegetales grasa y fibra.

CONCLUSIONES

La finalidad de la practica es la búsqueda de parásitos hasta el momento no hemos encontrado. Con la práctica continua llegaremos a encontrarlos. En las practicas anteriores  y en esta ultima solo hemos hallado grasa, fibra .y restos vegetales e incluso creímos encontrar una amiba pero  no era así solo se trataba de una fibra. Es muy interesante la parasitología espero encontremos uno muy pronto para poderlos conocer mejor ya no solo por las descripciones si no también por la visualización. 

PAGINAS CONSULTADAS

new.medigraphic.com/cgi-bin/resumenMain.cgi?...8671...942

www.buenastareas.com › Temas Variados

www.ucol.mx/acerca/coordinaciones/cgd/DGEMS/.../manaclinico3.p...